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麗格海棠組織培養技術(shù)(附配方)

麗格海棠( Begonia elalior為秋海棠科秋海棠屬多年生草本花卉,為球根海棠和野生秋海棠雜交選育而成。其花期長(cháng)、花朵大、花色豐富、鮮艷,深受消費者的歡迎,多用于家庭幾案、桌飾、窗飾、賓館大堂、客廳、餐廳和會(huì )議室擺放,是冬春季節美化室內環(huán)境的重要花卉。麗格海棠通常無(wú)種子,一般采用扦插、組織培養進(jìn)行繁殖。扦插繁殖主要以莖插和葉插為主,但繁殖速度慢,且非常容易爛根,很難滿(mǎn)足市場(chǎng)需求。筆者采用麗格海棠不同部位,對其進(jìn)行叢生芽誘導、繼代增殖和生根培養比較研究,以建立一套完整的組織培養體系。


材料與方法

  1.1試驗材料供試材料為盆栽麗格海棠。

  1.2試驗方法

  1.2.1培養基的配制。

采用MS 培養基,pH 5.8,在121~126 ℃滅菌15-20 min。蔗糖30 g /L,卡拉膠9.0 g /L。


誘導培養基: MS + 6-BA1.0mg/L + NAA0.2mg/L + 腺嘌呤8mg/LMS + 6-BA 1.5mg/L +NAA 0.1mg/LMS+ 6-BA 2.0mg/L + NAA 0.1mg/LMS + 6-BA 1.0mg/L + 2,4-D 0.2mg /LMS + 6-PA 1.0mg /L + NAA 0.2mg/LMS + 6-BA1.5mg/L + NAA 0.2mg/LMS + 6-BA 1.5mg/L + NAA 0.2mg /L + 腺嘌呤8mg/LMS + 6-BA 1.0mg/L + NAA 0.1mg /LMS + 6-BA 1.5mg/L + 2-4,D 0.1mg/LMS + 6-BA 0.5mg /L + NAA 0.8mg/LMS + 6-BA 1.5mg/L + 2-4,D 0.1mg /L + NAA 0.1mg/LMS + 6-BA 0.5mg/L + NAA 0.6mg /LMS + 6-BA 0.5mg/L + NAA 0.4mg/LMS + 6-BA 0.5mg /L + NAA 0.2mg/L + 腺嘌呤8mg/LMS + 6-BA 0.3mg/L+ NAA 0.4mg/LMS + 6-BA 0.8mg/L + NAA 0.4mg/L + 腺嘌呤8mg/LMS + 6-BA 0.5mg/L + NAA 0.4mg/L + 2,4-D0.1mg/LMS + 6-BA 0.5mg/L + 2,4-D 0.1mg/L。

繼代培養基: MS + 6-BA 1.0mg/L +IBA 0.2mg/LMS+6-BA 1.0mg/L + IBA 0.1mg/L + NAA 0.1mg/L。


壯苗培養基: 以繼代配方為基礎,大量元素減半,糖類(lèi)減半,不添加激素。


生根培養基: 1 /2MS + IBA 0.1mg/L +NAA 0.1mg/L;1/2MS + NAA 0.3mg/L1 /2MS + NAA 0.6mg/L3 /4MS +IBA 0.3mg/L + KT 0.15mg/L。


1.2.2培養條件。溫度22-26 ℃,光照強度1 200-1 500lx,光照周期12-14 h /d。


  1.2.3外植體的消毒及處理 取麗格海棠的成熟和幼嫩葉片、葉柄、莖段,將外植體放置于密封培養瓶中,在的冰箱中冷藏12-24 h 備用,將處理后的材料中放于少量洗衣液(0.5%的水中浸泡并搖勻, 30 s 后把浸泡液倒掉,放于流水下沖洗10 min。在超凈工作臺上先用2%次氯酸鈉浸泡搖勻8~10 min葉片8 min其余外植體10min, 很后用無(wú)菌水沖洗次,每次3min 左右。再用0.1%升汞浸泡搖勻消毒8~10 min,將消毒好的外植體置于經(jīng)過(guò)高溫滅菌后的無(wú)菌水空瓶中并蓋好蓋子,接種時(shí)先用消毒后的鑷子夾出放在經(jīng)高溫滅菌的牛皮紙上,然后用消毒過(guò)的解剖刀或刀片對外植體進(jìn)行切割,葉片切成1 cm左右大小,葉柄、莖段切成1 cm左右,接種于培養基上。


外植體培養30 60 d 后分別統計死亡率和分化率。污染率污染數/接種總數× 100%。死亡率死亡外植體數/有效外植體總數( 即接種數- 污染數) × 100%。分化率分化外植體數/有效外植體總數× 100%。


1.2.4不同外植體分化情況比較。選取麗格海棠的葉片、葉柄、莖段( 有葉腋生長(cháng)點(diǎn)) 為外植體,觀(guān)察統計污染率、死亡率和分化率。


1.2.5繼代培養。取誘導分化出的叢生芽,接種到培養基上,每瓶接種3-4 團叢生芽,然后放入培養室中培養, 30 d后觀(guān)察其繼代生長(cháng)情況。


  1.2.6壯苗培養。將符合壯苗的小型繼代苗植株,按無(wú)菌操作要求接種到壯苗配方培養基上,每瓶3-5 個(gè)小植株苗,然后放入培養室中培養, 30 d 后觀(guān)察其生長(cháng)情況。


  1.2.7生根培養。選擇生長(cháng)健壯且高3-5 cm的增殖苗,將其分成單苗接入生根培養基中進(jìn)行生根培養, 30 d 后調查其生根率和根系生長(cháng)狀況。


結果與分析

2.1 不同培養基對外植體愈傷組織形成與分化的影響 由表1可知,綜合考慮葉片培養污染率、60 d 死亡率和60 d 分化率,葉片適宜培養基為MS +6-BA 1.0mg/L + NAA 0.2mg/L +腺嘌呤8mg/L,雖然其分化率只有34.8%,但由于污染率低,總體表現 很好; 葉柄適宜培養基為MS +6-BA 0.5mg/L +NAA0.2mg/L + 腺嘌呤8mg/L,此培養條件下污染率為20.0%, 60d 死亡率和60d 分化率分別達到33.3%66.7%莖段適宜培養基為MS + 6-BA 0.5mg/L + NAA 0.4mg/L + 2,4-D 0.1mg /L。一般30 d 分化率高的60d 分化率也較高,但葉柄培養基MS +6-BA 0.5mg/L + NAA0.2mg/L + 腺嘌呤8mg/L, 30d分化率只有8.3%,而60 d 分化率卻達到66.7%。綜合來(lái)看,適宜葉片分化的激素配比為MS + 6-BA 1.0mg/L + NAA 0.2mg /L + 腺嘌呤8mg/L,適宜葉柄分化的激素配比為MS +6-BA0.5mg/L + NAA 0.2mg/L + 腺嘌呤8mg/L,適宜莖段分化的激素配比為MS +6-BA 0.5mg/L + NAA 0.4mg/L +2, 4-D 0.1mg /L。


  同時(shí),由于葉片在培養過(guò)程中,污染率相對較低,整體分化率相對較高更適宜應用于離體培養。


  葉片誘導形成愈傷組織的情況見(jiàn)圖1,莖段和葉柄誘導產(chǎn)生芽和愈傷組織的情況見(jiàn)圖2。

  2.2繼代培養 將誘導培養的芽苗切割后轉入增殖培養基中,培養30 d 后的增殖結果表明,MS + 6-BA 1.0mg/L + IBA0.2mg/L 培養基30 d 后新的叢芽長(cháng)高長(cháng)大,葉子膨脹,苗莖長(cháng)高變粗,形成小植株,生長(cháng)狀況旺盛( 圖3a。雖然MS+ 6-BA 1.0mg/L + IBA 0.1mg/L + NAA 0.1mg/L 培養基也有部分開(kāi)始長(cháng)出新的叢芽,但叢芽不明顯,局部發(fā)黃,呈玻璃化現象( 圖3b,因此,在后期的壯苗培養過(guò)程中,以此培養基作為壯苗培養的基礎培養基。


  2.3 壯苗培養 30 d 后壯苗結果( 圖3c表明,經(jīng)過(guò)壯苗,植株明顯變得更加粗壯,為生根培養奠定基礎。


2.4 生根培養 由表2可知,不同培養基都可以誘導生根,NAA 濃度過(guò)高時(shí),根較細長(cháng),降低NAA 濃度,添加6-BA 時(shí),根系生長(cháng)茂密、粗壯,因此,誘導麗格海棠瓶苗生根較為理想的培養基為1/2MS +6-BA 0.1mg/L + NAA 0.1mg/L3d、e、f。



結論與討論

  在組織培養中,生長(cháng)素能引起完整組織中細胞擴展,其生理作用是促進(jìn)細胞和器官的伸長(cháng)和細胞分裂,4的低溫預處理有利于葉片、葉柄和莖段外植體的誘導培養。不同外植體其分化途徑不同,葉片和葉柄經(jīng)愈傷組織誘導成芽,莖段則可直接進(jìn)行芽的誘導,雖然縮短了培養時(shí)間,但愈傷組織誘導的叢生芽較多。如將莖段和葉柄進(jìn)行下冷藏48h 前處理,莖段和葉柄在初代培養中液體溢出量少,污染率和死亡率低,且分化出芽所需時(shí)間短,可能因為低溫處理時(shí),一方面低溫可能在一定程度上抑制微生物的生長(cháng),另一方面,在冷藏階段,莖或葉柄切段的分泌物己有部分外滲,因而培養階段分泌物量減少,對外植體的浸泡及毒害作用也就減輕,從而降低了初代培養的死亡率和污染率,大大提高了組培效率。



  初代培養的目的是建立無(wú)菌的植物組織培養離體生長(cháng)體系,因此其成功與否是組織培養能否進(jìn)行的關(guān)鍵環(huán)節。由于受植物遺傳特性、生理生態(tài)特性及外界環(huán)境條件等的影響,不同植物啟動(dòng)其離體器官或組織脫分化,進(jìn)而再分化建立組織培養無(wú)性系所需的條件不同。全能性是任何植物活細胞都具有的一個(gè)特性,但在一個(gè)物種中可能并非所有的品種,在一個(gè)屬中也可能并非所有的種都能同樣地表達這個(gè)特性。在由同一個(gè)植株切取的外植體中,全能性的表達與否還可能因外植體的生理狀態(tài)而不同。在快速繁殖中,重要的是選擇 很佳狀態(tài)的組織或器官,且這些組織或器官能夠盡快誘導形態(tài)發(fā)生,這是實(shí)現快速繁殖的關(guān)鍵。秋海棠屬植物組織培養中,葉片、葉柄、花梗、花瓣以及嫩莖均可作為離體培養對象,但 很常用的外植體類(lèi)型是葉片和葉柄,因為葉片和葉柄資源豐富,取材容易。四季秋海棠、鐵十字秋海棠、蓮葉秋海棠、突脈秋海棠均有以葉片作為外植體進(jìn)行離體培養的報道; 蟆葉秋海棠及其雜種的組織培養中,絕大多數以葉柄作為外植體,其次是葉片;而球根秋海棠和麗格海棠雜種群,多以葉片作為外植體實(shí)現植株再生,其次是葉柄。鐘十傳等研究表明,秋海棠屬植物中的球根秋海棠金正日花組織培養中嫩葉是適宜的外植體類(lèi)型。陳瓊珍等在鐵十字秋海棠組培快速繁殖研究中,采用卷成漏斗狀尚未展開(kāi)的嫩葉作為離體培養的外植體,啟動(dòng)培養效果好。但該試驗中,中度成熟器官無(wú)論從成活率還是分化率上均優(yōu)于幼嫩器官,因為后者在表面消毒過(guò)程中極易死亡,從而初代培養成功率很低。秋海棠屬植物組織培養中以莖段作為外植體的報道較少,可能是莖段含水量較高不易成活。


  該研究對葉、葉柄和莖段外植體的死亡情況和分化情況進(jìn)行比較表明,經(jīng)愈傷組織誘導途徑的誘導系數遠大于直接芽誘導途徑,但愈傷組織誘導途徑誘導時(shí)間較長(cháng),一般為20-60 d,芽誘導途徑較快, 20 d 左右分化。莖段作為外植體進(jìn)行離體培養時(shí),可不經(jīng)過(guò)愈傷組織階段直接誘導出芽,其分化出芽所需時(shí)間短,約20 d 即開(kāi)始分化,芽色嫩綠; 而葉片、葉柄和莖段誘導形成愈傷組織的時(shí)間約50 d,雖然反應時(shí)間慢,但產(chǎn)生的愈傷組織團多,誘導叢生芽的數量也多,生長(cháng)狀況更加良好。


  該試驗通過(guò)對麗格海棠葉片、葉柄和莖段離體培養技術(shù)的研究,建立了一套較完善的組培快繁體系。MS + 6-BA 1.0mg /L + 2,4-D 0.2mg/L + 腺嘌呤8mg/L是誘導葉片愈傷組織培養的 很佳激素配比; MS + 6-BA 0.5mg/L + NAA 0.2mg /L + 腺嘌呤8mg/L 是誘導葉柄和愈傷組織培養的 很佳激素配比,2,4-D 在麗格海棠組織培養過(guò)程中,能夠很好地促進(jìn)愈傷組織的形成; MS + 6-BA 0.5mg/L +NAA 0.4mg/L + 2,4-D0.1mg/L 是誘導莖段愈傷組織的 很佳激素配比; MS + 6-BA 1.0mg/L + IBA 0.2mg/L 是繼代培養的 很佳激素配比,1 /2MS + IBA 0.1mg/L +NAA 0.1mg/L 是生根培養的 很佳激素配比。該研究為麗格海棠工業(yè)化生產(chǎn)提供一定的理論依據。


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